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暫無數據,詳情請致電:18819137158 謝謝!
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細胞染色方法總結
[2013/9/17]
hoechest33342和hoechst33258兩種(主要為凋亡活細胞)在紫外光下將核染為藍色。Hoechst染細胞核會影響共聚焦顯微鏡對該樣本其他熒光的觀察效果。hoechsthoechsts33258,hoechst33342二者區別不大,但是hoechst33342對細胞的毒性作用更小一些,所以一般來說hoechsts33258用于細胞固定后再染色,而hoechst33342則可以對活細胞直接進行染色!
染色步驟
PI(PropidiumIodide碘化丙啶)染色:是一種可對DNA染色的細胞核染色(PropidiumIodide,PI)是一種核酸染料(紅試劑,常用于細胞凋亡檢測。碘化丙啶色),它不能透過完整的細胞膜,但凋亡中晚期的細胞和壞死細胞由于細胞膜通透性的增加,PI能夠透過細胞膜而使細胞核染紅。
用PI單一染色觀測培養細胞,只能表示細胞的壞死情況,而不是凋亡(當然晚期凋亡PI亦可著色)。但是如果您只是想知道細胞的死亡情況,而不是仔細區分壞死或凋亡,那么PI單一染色也可以。但是如果您一定要認定細胞的凋亡,那么PI單一染色顯然不夠!
annexin-v染色細胞凋亡早期,細胞膜標志發生改變。其中,磷脂酰絲氨酸(Annexin-V,PS)外翻,Annexin-V在Ca2+存在的條件下與其高親和力特異性結合。這樣,Annexin-v染色陽性,表示細胞處于早期凋亡狀態。Annexin-V結合不同的熒光抗體,就可以利用流式細胞儀、熒光顯微鏡以及共聚焦激光掃描顯微鏡檢測細胞凋亡的發生。AnnexinV用FITC標記發綠色熒光;如果用PE標記就發紅色熒光。
JC-1染色JC-1是一種陽離子染料,可以在線粒體內聚集,低濃度時主要以單體(monomer)存在,發射光以綠光(~525nm)為主;而在高濃度時則可以形成多聚體(aggregation),發射光以紅光(-590nm)為主。線粒體本身存在一定的極性(polarization),其外膜為負極,內膜為正極。電位差由Ca2+、Na+和H+流調控。當線粒體狀態良好時對JC-l攝取量少,因而在線粒體內主要以單體的形式存在綠光強度/紅光強度的比值較高。
在線粒體發生去極化(depolarization)時,線粒內JC-l的濃度較高,多以多聚體的形式存在,綠光強度/紅光強度的比值降低。JC-1染色的綠光強度/紅光強度僅取決于線粒體的膜電勢(membranepotential),而與線粒體的形態、體積和密度都無關,因而能更好地反映線粒體的功能狀態。由于凋亡發生的早期存在線粒體的去極性,因此,JC-1染色被用于檢測凋亡的早期發生。其實驗方法如下。
JC-l染色非常簡單。首先可將成品JC-1以DMSO配成儲存液(1~5 mg/ml),儲存于-20℃,用時以培養液稀釋至10 ug/ml 終濃度。對貼壁細胞可以直接棄去培養液,漂洗細胞后直接加入染色液,10~30 min后在熒光顯微鏡下或者激光共聚焦下觀察。線粒體狀態好時細胞以綠色為主,當紅光信號增強時,紅綠相疊,以橙色為主。該染色運用于懸浮細胞時還可以通過流式細胞儀進行檢測,收集紅/綠信號強度,計算其強度比。
鈣黃綠素-AM(Calcein-AM):Calcein-AM本身并不是熒光分子,但通過活細胞內的酯酶作用,Calcein-AM能脫去AM基,產生的Calcein能發出強綠色熒光(激發:490 nm,發射:515 nm)。因此Calcein-AM僅對活細胞染色。
染色步驟
PI(PropidiumIodide碘化丙啶)染色:是一種可對DNA染色的細胞核染色(PropidiumIodide,PI)是一種核酸染料(紅試劑,常用于細胞凋亡檢測。碘化丙啶色),它不能透過完整的細胞膜,但凋亡中晚期的細胞和壞死細胞由于細胞膜通透性的增加,PI能夠透過細胞膜而使細胞核染紅。
用PI單一染色觀測培養細胞,只能表示細胞的壞死情況,而不是凋亡(當然晚期凋亡PI亦可著色)。但是如果您只是想知道細胞的死亡情況,而不是仔細區分壞死或凋亡,那么PI單一染色也可以。但是如果您一定要認定細胞的凋亡,那么PI單一染色顯然不夠!
annexin-v染色細胞凋亡早期,細胞膜標志發生改變。其中,磷脂酰絲氨酸(Annexin-V,PS)外翻,Annexin-V在Ca2+存在的條件下與其高親和力特異性結合。這樣,Annexin-v染色陽性,表示細胞處于早期凋亡狀態。Annexin-V結合不同的熒光抗體,就可以利用流式細胞儀、熒光顯微鏡以及共聚焦激光掃描顯微鏡檢測細胞凋亡的發生。AnnexinV用FITC標記發綠色熒光;如果用PE標記就發紅色熒光。
JC-1染色JC-1是一種陽離子染料,可以在線粒體內聚集,低濃度時主要以單體(monomer)存在,發射光以綠光(~525nm)為主;而在高濃度時則可以形成多聚體(aggregation),發射光以紅光(-590nm)為主。線粒體本身存在一定的極性(polarization),其外膜為負極,內膜為正極。電位差由Ca2+、Na+和H+流調控。當線粒體狀態良好時對JC-l攝取量少,因而在線粒體內主要以單體的形式存在綠光強度/紅光強度的比值較高。
在線粒體發生去極化(depolarization)時,線粒內JC-l的濃度較高,多以多聚體的形式存在,綠光強度/紅光強度的比值降低。JC-1染色的綠光強度/紅光強度僅取決于線粒體的膜電勢(membranepotential),而與線粒體的形態、體積和密度都無關,因而能更好地反映線粒體的功能狀態。由于凋亡發生的早期存在線粒體的去極性,因此,JC-1染色被用于檢測凋亡的早期發生。其實驗方法如下。
JC-l染色非常簡單。首先可將成品JC-1以DMSO配成儲存液(1~5 mg/ml),儲存于-20℃,用時以培養液稀釋至10 ug/ml 終濃度。對貼壁細胞可以直接棄去培養液,漂洗細胞后直接加入染色液,10~30 min后在熒光顯微鏡下或者激光共聚焦下觀察。線粒體狀態好時細胞以綠色為主,當紅光信號增強時,紅綠相疊,以橙色為主。該染色運用于懸浮細胞時還可以通過流式細胞儀進行檢測,收集紅/綠信號強度,計算其強度比。
鈣黃綠素-AM(Calcein-AM):Calcein-AM本身并不是熒光分子,但通過活細胞內的酯酶作用,Calcein-AM能脫去AM基,產生的Calcein能發出強綠色熒光(激發:490 nm,發射:515 nm)。因此Calcein-AM僅對活細胞染色。
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