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植物病原真菌的分離培養
[2013/7/8]
一、實驗原理
植物患病組織內的真菌菌絲體,如果給予適宜的環境條件,除個別種類外,一般都能恢復生長和繁殖。植物病原菌的分離就是指通過人工培養,從染病植物組織中將病原真菌與其它雜菌相分開,并從寄主植物中分離出來,再將分離到的病原菌于適宜環境內純化,這個過程總稱植物病菌的分離培養。植物病原真菌的分離一般都是采用組織分離法,就是切取小塊病組織,經表面消毒和滅菌水洗過后,移到人工培養基上培養。
二、實驗目的
植物病原菌的分離培養是植物病理學實驗最基本的操作技術之一,它對原害鑒定,病原形態觀察、植物病害接種體的培養等方面都是經常使用的研究手段。通過本實驗,要求植物病原菌分離培養的一般原則和方法。
三、實驗材料及準備
1.分離材料:梨黑斑病(Alternaria kikuchiana),柿樹圓斑病(Pestnlotia sp)及杉木炭疽病(Glomerella cingolata)新發病的病葉;楊樹爛皮病(Cytospora chrysosperma)國槐腐爛病(Dothiorella sp.)的帶有新病斑的枝條;油松種子。
2.分離用具(每小組為單位)
酒精燈4個,手術剪4把,眼科鑷4把,PDA培養基3瓶,培養皿(Φ9cm)24套,小燒杯(5ml)4個,大燒杯1個,斜面培養基12管,滅菌水4瓶,75%酒精瓶1個(內放脫脂棉球)0.1%升汞瓶1個,5%乳酸瓶(60ml)1個,火柴1盒,濕、干紗布各4張。
四、實驗方法及步驟
(一)分離前的準備工作
1.工作環境的清潔和消毒
分離培養一般在無菌室、無菌箱或無菌工作臺(超凈工作臺)上進行,無菌室和無菌箱要經過噴霧除塵,并用藥物或紫外線照射消毒(常用消毒藥物為70%酒精,2%煤酚皂液,5%石炭酸液等噴霧。若用紫外線燈照射則需20-30分鐘)。在沒有上述設備條件時,在清潔房間里關閉門窗,避免空氣流動,經過噴霧除去空氣及地面灰塵后進行操作,也可獲得較好的結果。工作前擦凈桌面,最好鋪上濕紗布。將所需用的物品按次序放在工作臺上,避免工作時走動,工作人員最好穿上滅菌后的工作服,帶上口罩,并用肥皂洗手,用70%酒精或0.1%新潔爾滅擦手。
2.分離用具的消毒
凡是和分離材料接觸的器皿(刀、剪、鑷、針等)都要隨時(至少在使用時)保持無菌,將這些用具浸于70%酒精中,使用時在燈焰上滅菌燒去酒精,如此2-3次(刀、剪、鑷等不宜在燈焰上燒時過長,以防退火)。再次使用時必須重復滅菌。培養皿、試驗等要經過干熱滅菌。培養基及洗滌或稀釋用蒸餾水都需要事先經過高壓蒸氣滅菌。
3.分離材料的選擇
用新發病的植株、器官或組織做為分離材料,可以減少腐生菌的污染。任何植物壞死部分的內部或表面,都可能有腐生微生物的孽生,所以一般斑點病害應從鄰近健全組織,即從病、健組織交界處獲得分離材料。
(二)植物病原菌的分離
1.葉斑類和枝桿病斑類(非維管束侵染)病原菌分離
首先選擇具有典型癥狀的新鮮病葉作為分離材料,按下述步驟操作:
①培養基平板制備:將PDA培養基在微波爐中加熱熔化驗,以無菌操作法將溶化過的培養基傾注入滅過菌的培養基中,每皿經12毫升,可形成2-3毫米厚的平板。(為防止細菌污染,倒碟前給每三角瓶內加6%乳酸4-6滴)。
②病葉或病枝經自來水沖洗,從病斑周轉1-2毫米處的健組織部位剪下(若為枝干,則將帶有病斑的皮層剝下,但)。
③取10毫升小燒杯經酒帶消毒,放入分離材料,倒入0.1%升汞液適量作表面消毒一分鐘,或用1%漂白粉消毒均可。
④消毒后傾出消毒液,用無菌水沖洗2——3,最后一次無菌水不要倒掉。
⑤用滅菌鑷,剪在無菌水中將分離材料剪成2——3毫米大小的方塊,每塊組織均應為病健相間組織。用滅菌鑷子夾取剪好的材料,放入培養基平板上,輕輕按壓。每皿4——5塊,排放均勻。
⑥用蠟筆在培養皿上注明分離代號,日期、姓名,將培養皿翻轉放置于23—25℃
⑦3-4日后挑選由分離材料上長出的典型而無雜菌的菌落,在菌落邊緣用移菌針挑取帶有菌絲的培養基一小塊,轉入試管斜面培養基中央,于25℃溫箱中培養。
2.種子內病菌的分離
將整粒種子或種子的一部分進行沖洗,再經表面消毒(升汞或漂白粉),最后用滅菌水洗滌后移到人工培養基平板上培養(或者直接放在皿內保濕培養于25℃溫箱中)。
3.危害輸導組織病原的分離(以枯萎病為代表)
先將分離莖作表面消毒,然后用滅菌刀剝去表皮,剪取其中小塊變色的維管束組織,再用漂白粉進行表現消毒后,移于培養基平面上培養。
4.分離物的純化
前述方法獲得分離物,必須經過純化,才能成為培養,純化的方法有單孢子分離法和邊續稀釋培養法兩種,后者簡便,為了一般研究所常用。
連續稀釋法:對真菌材料來說,就是從典型菌落邊緣切取含有菌絲的培養基一小塊,移植于另一培養基平板上,待菌落形成后,再依此法移植。如此數次,直至菌落形態典型,無雜菌時即可移入斜面試管中培養保存。
附:
1、0.1%升汞液的配制:升汞1克,濃鹽酸2.5毫升;加水1000毫升。注意要先將升汞用鹽酸溶解,然后加水稀釋。
2、P.D.A培養基成分;馬鈴薯200克,葡萄糖10-20克,洋菜17-20克,水1000毫升。
3、水洋菜培養基成分,洋菜17-20克,水1000毫升。
植物患病組織內的真菌菌絲體,如果給予適宜的環境條件,除個別種類外,一般都能恢復生長和繁殖。植物病原菌的分離就是指通過人工培養,從染病植物組織中將病原真菌與其它雜菌相分開,并從寄主植物中分離出來,再將分離到的病原菌于適宜環境內純化,這個過程總稱植物病菌的分離培養。植物病原真菌的分離一般都是采用組織分離法,就是切取小塊病組織,經表面消毒和滅菌水洗過后,移到人工培養基上培養。
二、實驗目的
植物病原菌的分離培養是植物病理學實驗最基本的操作技術之一,它對原害鑒定,病原形態觀察、植物病害接種體的培養等方面都是經常使用的研究手段。通過本實驗,要求植物病原菌分離培養的一般原則和方法。
三、實驗材料及準備
1.分離材料:梨黑斑病(Alternaria kikuchiana),柿樹圓斑病(Pestnlotia sp)及杉木炭疽病(Glomerella cingolata)新發病的病葉;楊樹爛皮病(Cytospora chrysosperma)國槐腐爛病(Dothiorella sp.)的帶有新病斑的枝條;油松種子。
2.分離用具(每小組為單位)
酒精燈4個,手術剪4把,眼科鑷4把,PDA培養基3瓶,培養皿(Φ9cm)24套,小燒杯(5ml)4個,大燒杯1個,斜面培養基12管,滅菌水4瓶,75%酒精瓶1個(內放脫脂棉球)0.1%升汞瓶1個,5%乳酸瓶(60ml)1個,火柴1盒,濕、干紗布各4張。
四、實驗方法及步驟
(一)分離前的準備工作
1.工作環境的清潔和消毒
分離培養一般在無菌室、無菌箱或無菌工作臺(超凈工作臺)上進行,無菌室和無菌箱要經過噴霧除塵,并用藥物或紫外線照射消毒(常用消毒藥物為70%酒精,2%煤酚皂液,5%石炭酸液等噴霧。若用紫外線燈照射則需20-30分鐘)。在沒有上述設備條件時,在清潔房間里關閉門窗,避免空氣流動,經過噴霧除去空氣及地面灰塵后進行操作,也可獲得較好的結果。工作前擦凈桌面,最好鋪上濕紗布。將所需用的物品按次序放在工作臺上,避免工作時走動,工作人員最好穿上滅菌后的工作服,帶上口罩,并用肥皂洗手,用70%酒精或0.1%新潔爾滅擦手。
2.分離用具的消毒
凡是和分離材料接觸的器皿(刀、剪、鑷、針等)都要隨時(至少在使用時)保持無菌,將這些用具浸于70%酒精中,使用時在燈焰上滅菌燒去酒精,如此2-3次(刀、剪、鑷等不宜在燈焰上燒時過長,以防退火)。再次使用時必須重復滅菌。培養皿、試驗等要經過干熱滅菌。培養基及洗滌或稀釋用蒸餾水都需要事先經過高壓蒸氣滅菌。
3.分離材料的選擇
用新發病的植株、器官或組織做為分離材料,可以減少腐生菌的污染。任何植物壞死部分的內部或表面,都可能有腐生微生物的孽生,所以一般斑點病害應從鄰近健全組織,即從病、健組織交界處獲得分離材料。
(二)植物病原菌的分離
1.葉斑類和枝桿病斑類(非維管束侵染)病原菌分離
首先選擇具有典型癥狀的新鮮病葉作為分離材料,按下述步驟操作:
①培養基平板制備:將PDA培養基在微波爐中加熱熔化驗,以無菌操作法將溶化過的培養基傾注入滅過菌的培養基中,每皿經12毫升,可形成2-3毫米厚的平板。(為防止細菌污染,倒碟前給每三角瓶內加6%乳酸4-6滴)。
②病葉或病枝經自來水沖洗,從病斑周轉1-2毫米處的健組織部位剪下(若為枝干,則將帶有病斑的皮層剝下,但)。
③取10毫升小燒杯經酒帶消毒,放入分離材料,倒入0.1%升汞液適量作表面消毒一分鐘,或用1%漂白粉消毒均可。
④消毒后傾出消毒液,用無菌水沖洗2——3,最后一次無菌水不要倒掉。
⑤用滅菌鑷,剪在無菌水中將分離材料剪成2——3毫米大小的方塊,每塊組織均應為病健相間組織。用滅菌鑷子夾取剪好的材料,放入培養基平板上,輕輕按壓。每皿4——5塊,排放均勻。
⑥用蠟筆在培養皿上注明分離代號,日期、姓名,將培養皿翻轉放置于23—25℃
⑦3-4日后挑選由分離材料上長出的典型而無雜菌的菌落,在菌落邊緣用移菌針挑取帶有菌絲的培養基一小塊,轉入試管斜面培養基中央,于25℃溫箱中培養。
2.種子內病菌的分離
將整粒種子或種子的一部分進行沖洗,再經表面消毒(升汞或漂白粉),最后用滅菌水洗滌后移到人工培養基平板上培養(或者直接放在皿內保濕培養于25℃溫箱中)。
3.危害輸導組織病原的分離(以枯萎病為代表)
先將分離莖作表面消毒,然后用滅菌刀剝去表皮,剪取其中小塊變色的維管束組織,再用漂白粉進行表現消毒后,移于培養基平面上培養。
4.分離物的純化
前述方法獲得分離物,必須經過純化,才能成為培養,純化的方法有單孢子分離法和邊續稀釋培養法兩種,后者簡便,為了一般研究所常用。
連續稀釋法:對真菌材料來說,就是從典型菌落邊緣切取含有菌絲的培養基一小塊,移植于另一培養基平板上,待菌落形成后,再依此法移植。如此數次,直至菌落形態典型,無雜菌時即可移入斜面試管中培養保存。
附:
1、0.1%升汞液的配制:升汞1克,濃鹽酸2.5毫升;加水1000毫升。注意要先將升汞用鹽酸溶解,然后加水稀釋。
2、P.D.A培養基成分;馬鈴薯200克,葡萄糖10-20克,洋菜17-20克,水1000毫升。
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