通常情況下，抗體經恰當保存和處理，大多數應能保持活性數月乃至數年。當然，不同類型抗體，其保存的方法也可能不一樣，以下就抗體的保存，提供一些參考!

　　一、保存溫度和條件

　　對于很多抗體而言，保存在-20℃是完全足夠了，沒有任何證據顯示保存在-80℃會有更多的好處!分裝成小等份可最大程度減少由凍融造成的損傷，以及從單個試劑瓶中多次吸取而引入的污染。小等份只需凍融一次，如有剩余，可將剩余物保存于 4oC. 在收到抗體時，在 10,000 × g 下離心 20 秒以沉積截留于試劑瓶螺紋的溶液，并以小等份轉移至低蛋白結合微量離心管中。小等份的量取決于實驗人員在實驗中通常采用的量。小等份應不小于10 µl; 等份越小，儲液濃度因抗體蒸發及吸附于保存瓶表面而受到的影響越大。

　　在大多數情況下，收到抗體時在 4oC 下保存一至兩周，然后再冷凍進行長期保存是可接受的，但也許腹水液是例外，它可能包含蛋白酶，因而應該盡快凍存。同樣，遵照說明書上的建議是重要的。

　　大部分抗體的運輸條件：一般的運輸過程需要1-2周的時間，所以是在4℃的條件下來完成的。

　　對于特殊的抗體，如酶、熒光素等偶聯抗體、IgG3同型抗體等抗體的保存有其注意事項：

　　1、偶聯抗體 酶偶聯抗體不應凍存，而應保存于 4oC. 凍融不僅影響抗體結合能力，還會降低酶活性。無論偶聯至熒光染料、酶還是生物素，偶聯抗體都應保存于深色試劑瓶中或用金屬箔包裹. 暴露于光線中將損害偶聯物的活性。特別是熒光偶聯物易受到光漂白影響，在實驗的所有階段都應避光。

　　2、IgG3的同型對照 保存在4℃，避免凍起來。因為如果出現凍融過程，該抗體非常容易形成多聚體

　　二、用疊氮化鈉防止污染

　　為了防止微生物污染，可將疊氮化鈉加入抗體制備品中達到0.02% (w/v). 的終濃度。但是有時不能使用疊氮化鈉，有以下兩中情形：

　　(1)、如果用抗體染色或處理活細胞，或如果用抗體進行體內研究，一定要使用不包含疊氮化鈉的制備品。該抗菌劑也對大多數其它生物具有毒性：它阻斷細胞色素電子傳遞系統。

　　(2)、疊氮化鈉會干擾氨基參與的任何偶聯，應在偶聯進行前除去。偶聯后，

　　抗體可保存于疊氮化鈉中，除此以外，0.01% 硫汞撒(硫柳汞)不含伯胺，也是可接受的替代物。

　　疊氮化鈉可通過透析或凝膠過濾從抗體溶液中除去。IgG 的分子量為 150,000 道爾頓(IgM 為約 600,000);疊氮化鈉的分子量為 65 道爾頓。截留分子量為 14,000 道爾頓的微透析裝置可保留抗體同時使疊氮化物向外擴散。在保持于 4oC 的磁性攪拌器上的燒杯中，每毫升抗體使用至少一升冷 PBS 并攪拌透析裝置 6 小時。更換 PBS 兩次，每次更換攪拌至少 6 小時。如有可能，所有材料都應滅菌并且所得的制備物應無菌操作。

　　三、冷凍/融化損傷

　　重復冷凍/融化循環可使抗體變性，導致其形成使抗體結合能力降低的聚集物。保存于 -20oC 對于大多數抗體是適當的;保存于 -80oC 無明顯優勢。冰箱不能為無霜型。 這些冷凍和融化之間的循環(以減少結霜)恰恰是應該避免的。出于相同原因，抗體試劑瓶應置于具有最小溫度波動的冰箱區域，例如朝冰箱后部放置而不是置于門架上。

　　有些研究人員加入冷凍保護劑甘油達到 50% 的終濃度以防止冷凍/融化損傷;甘油可將凝固點降低至低于 -20oC。雖然這對于很多抗體是可接受的，但還是不能確保在該保存條件下的穩定性，通常我們參考具體產品說明書提供的保存方法。在這里，我們也一般不建議將包含甘油的溶液保存于 -80oC，因為該溫度低于甘油的凝固點。還要注意甘油可被細菌污染。如果加入甘油或任何冷凍保護劑，則應當小心操作，以得到無菌制備物。

　　應避免抗體在稀釋至工作濃度后在 4℃ 下保存超過一天。蛋白質在高濃度下保存時一般不易降解，理想的濃度為 1 mg/ml 或更高。這是在抗體溶液中加入蛋白質例如 BSA 作為穩定劑的理論基礎。加入的蛋白質也有助于減少抗體因結合于容器壁上而造成的損失。對于打算進行偶聯的抗體而言，由于穩定蛋白質會與抗體競爭，降低了偶聯的效率，所以不應加入穩定蛋白質。